Responsables: Magali Grison (IE) et Clément Chambaud (IE)

Missions:

La cellule microscopie offre un service de soutien de l’activité de recherche des équipes du Laboratoire via notamment le développement et l’implantation de nouvelles méthodologies en collaboration étroite avec le Bordeaux Imaging Center, la veille technologique et la formation individuelle ou collective.  

A ce titre ses missions sont:

• Développement de techniques de pointe en microscopie électronique et photonique
• Adaptation des techniques aux tissus végétaux
• Pérennisation des méthodes mises en place 
• Formation et accompagnement des membres du laboratoires 
• Expertise et conseil sur les approches, l’analyse des images et les quantifications
• Participation aux projets de recherche nécessitant de l’imagerie

Membres: M. Grison (IE), C. Chambaud (IE) et A. Dumazel (Master2)

• – Microscopie plein champs et confocal, FRAP
• – Microscopie Multi-Photon, photo-activation
• – Microscopie super resolution : AiryScan, STED et tau-STED
• – Développement microscopie par expansion sur tissus végétaux
• – Préparation d’échantillons
• – Immunomarquage sur tissus végétaux (racine, feuilles)
• – Analyse d’image : FIJI, iLastick, MatLab, IMARIS 
• – Programmation de macro 

• – Microscopie électronique en transmission, tomographie électronique
• – Microscopie corrélative photonique/électronique pour échantillons végétaux
• – Microscopie plein champ, confocal, super résolution AiryScan
• – Développement de la microscopie METTEM pour tissus végétaux
• – Préparation d’échantillons végétaux pour la microscopie électronique/microscopie corrélative en chimique et cryo-méthodes
• – Immunomarquage pour la microscopie électronique 
• – Analyse d’image: FIJI, iLastik, iTomo, eMod

Dernières publications:

Articles:

• Phosphatidylinositol-4-phosphate controls autophagosome formation in Arabidopsis thaliana. R. Gomez, C. Chambaud, J. Lupette, J. Castets, S. Pascal, L. Borcard, L. Noack, Y, Jaillais, J. Joubès and A. Bernard*. DOI: 10.1038/s41467-022-32109-2 (2022)
• A correlative light electron microscopy approache reveals plasmodesmata ultrastructure at the graft interface. C. Chambaud, S. Cookson, N. Ollat, E. Bayer and L. Brocard*. January 2022 Plant physiology DOI: 10.1093/plphys/kiab485
• Plasma membrane-associated receptor like kinases relocalize to plasmodesmata in response to osmotic stress. M. Grison*, P. Kirk, M. Brault, XN Wu, W. Schulze, Y. Benitez-Alfonso, F. Immel and E. Bayer*. July 2019 Plant physiology DOI: 10.1104/pp.19.00473 (2019)
• Architecture and permeability of post-cytokinesis plasmodesmata lacking cytoplasmic sleeves. W. Nicolas, M. Grison, S. Trépout, A. Gaston, M. Fouché, F. Cordelières, K. Oparka, J. Tilsner, L. Brocard and E. Bayer* Nat Plants. 2017 Jun 12;3:17082. doi: 10.1038/nplants.2017.82. 

Methodes :

• Targeting ultrastructural events at thhe graft interface of Arabidopsis thalian by a correlative light electron microscopy approach. C. Chambaud, S. Cookson, N. Ollat, A. Bernard L. Brocard*. DOI: 10.21769/BioProtoc.4590 (2022)
• Quantification of protein enrichment at Plasmodesmata. M. Grison*, J. Petit, M. Glavier and E. Bayer*. DOI :10.21769/BioProto.3545 (2020)